IL－6的研究方法
1）用B9细胞株检测IL-6
1．取培养两天的B9细胞（对数生长期），用RPMI-1640培养液洗两次，每次离心250×g 10分钟，洗去培养液中的IL-6。用1％台盼蓝鉴定细胞活力，再用含5％小牛血清的RPMI-1640培养液将细胞稀释到5×104/ml。
2．取96孔细胞培养液，每孔加细胞悬液100μl。用细胞培养液稀释IL-6的标准品和待检样品，标准品从100pg/ml稀释到0.1pg/ml（共10个稀释度），待检样品10倍稀释或2倍稀释，每个稀释度3个复孔，每孔加100μl稀释样品。阴性对照孔加100μl培养液。
3．在37℃ 5％ CO2的饱和水汽二氧化碳培养箱中培养72小时。
4．向每孔中加10μl MTT（用PBS配成5mg/ml，滤过除菌，避光保存），继续培养4～5小时。每孔加25μl酸化SDS，充分混匀。放置室温暗处1小时，溶解结晶产物。在酶标计数仪中计数570nm处的光吸收值。
5．用光吸收值对标准IL-6的浓度作图，根据标准曲线判定样品的相对浓度。
2）检测IL-6刺激B细胞分化和产生Ig的活性
检测IL-6诱导
