目前有关NF-κB与肾脏疾病的关系研究主要集中在系膜细胞。Ruiz-Ortega等在培养的鼠系膜细胞中发现，AⅡ可活化NF-κB及促使系膜细胞MCP-1的mRNA基因表达，用NF-κB抑制剂PDTC可消除NF-κB的活性及抑制MCP-1m rNA表达。在小鼠免疫复合物肾炎模型中，肾脏细胞内NF-κB活性显著增加，且肾内MCP-1的mRNA表达与单核细胞浸润一致的上调，用ACEI可抑制NF-κB活性及mRNA的表达。提示，在肾脏内AⅡ可能参加了通过NF-κB激活调控MCP-1 mRNA的表达，导致单核细胞聚积。ACEI可能对肾脏疾病进展有治疗作用[11]。Brdd等在培养的人类系膜细胞中用IL-1在30分钟内诱导NF-κB活化，用蛋白激酶抑制剂TPCR可抑制IL-1诱导的系膜细胞NF-κB活化及MCP-1 mRNA表达[18]。说明了在系膜细胞MCP-1也许部分通过转录因子NF-κB的调节，为应用抑制NF-κB活化和抑制MCP-1产生治疗肾脏疾病提供了理论依据。FK506是一种免疫抑制剂，可抑制T细胞NF-AT和NF-κB的活性。Murao ka等实验证明了FK506可激活肾脏系膜细胞NF-κB的活性，调控IL-6表达，且在动物实验中FK506诱导肾脏NF-κB活化，调控IL-6产生增加，并使动物肾脏出现系膜增生性肾炎等肾脏病理改变[19]。Satriano等用TNFα及IgG分别刺激培养的系膜细胞增加了NF-κB的结合活性，用PDTC及HMAP减弱了TNFα及IgG诱导的NF-κB的活性。ROI（活性氧中间产物）为TNFα及IgG为刺激后活化NF-κB的调节者[21]。Kunzd等研究发现，地塞米松可抑制IL-1刺激的小鼠系膜细胞转录INOS mRNA表达，部分原因是与NF-κB活性被抑制有关[20]。在肾小管和肾脏上皮细胞研究中，Zoja等在培养的猪肾小管上皮细胞（LLC-PK1）给予高蛋白质负荷（BSA），促进了NF-κB活性及趋化因子RANTES产生，且发现免疫球蛋白可与BSA相同的效应。RANTES的产生随BSA剂量及时间依赖增加。用PDTC可抑制蛋白负荷导致的NF-κB活性和RANTES的产生。提示蛋白负荷部分通过NF-κB活化途径刺激RANTES产生，而化学趋化活性RANTES进入小管间质可能促进了炎症细胞的聚积，促进间质炎症肾病的进展[22]。Otieno等在体外培养的LIC-PK1细胞，用DCVC可诱导细胞NF-κB活化，参与转录调控，但可被抗氧化剂及蛋白激酶抑制剂所抑制[23]。Ridardson等认为IL-1β亦可激活培养的鼠肾小球上皮细胞的NF-κB。Amoah-Apra ku等的研究也提示肾小球上皮细胞INOS（NO合成酶）的转录调控也与NF-κB有关[24，25]。Gluber等研究ApoⅢ基因转录亦通过NF-κB调控，推测NF-κB参与血脂代谢调节[14]，在肾内上皮细胞NF-κB活化亦可能参与肾脏损伤和肾病进展。
已知MCP-1、RANTES、IL-6、NO等是肾脏的有害因子。在肾脏疾病的发病过程中许多因素可刺激NF-κB活化，参与调控炎症介质及细胞因子的产生。NF-κB作为一种转录因子在肾脏疾病状态下炎症介质和细胞因子的复杂网络中具有重要的调节作用。研究NF-κB的作用有利于从基因转录水平理解细胞因子，炎症介质之间的关系及其在肾脏发病机制中的作用。一种炎症介质或细胞因子可通过多种信号传递途径及转录因子的调节。而不同的因子本身可能通过多种不同信号传递途径影响不同的转录因子。这使NF-κB在细胞因子，炎症介质中作用更加复杂化。目前关于NF-κB与肾脏疾病的研究仅限于体外及动物实验。随着对NF-κB研究的深入，将会有利于阐明肾脏疾病的发病机制及防治。
综上所述，NF-κB作为一种转录调节因子在体内各组织细胞中广泛存在，调控众多的细胞因子和炎症介质的基因表达，调节免疫反应，参与细胞内信号传递。肾小球系膜细胞、小球上皮细胞和肾小管上皮细胞内NF-κB受刺激活化调控某些基因表达可能参与了肾脏某些病理生理过程，如肾小球炎症，肾毒性损害及肾脏疾病进展。随着对NF-κB研究的不断深入，将会对肾脏疾病发病机理有更深的认识。开展抑制NF-κB活化的有关药物研究有利于阐明某些药物作用的分子机制及疾病的防治。
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